用户名: 密码: 验证码:
山羊附睾头细胞转染中新霉素和嘌呤霉素的浓度筛选
详细信息    查看全文 | 推荐本文 |
  • 英文篇名:Screening of Neomycin and Puromycin Concentration in Transfection of Goat Epididymal Caput Cells
  • 作者:邰苗苗 ; 吴小叶 ; 杜海燕 ; 孟繁荣 ; 张春香 ; 任有蛇
  • 英文作者:TAI Miaomiao;WU Xiaoye;DU Haiyan;MENG Fanrong;ZHANG Chunxiang;REN Youshe;College of Animal Science and Veterinary Medicine,Shanxi Agricultural University;Bureau of Animal Husbandry and Veterinary in Pinglu District Shuozhou City;
  • 关键词:山羊附睾头细胞 ; 新霉素 ; 嘌呤霉素
  • 英文关键词:goat epididymal caput cells;;neomycin;;puromycin
  • 中文刊名:SXLX
  • 英文刊名:Journal of Shanxi Agricultural Sciences
  • 机构:山西农业大学动物科技学院;朔州市平鲁区畜牧兽医局;
  • 出版日期:2017-10-20
  • 出版单位:山西农业科学
  • 年:2017
  • 期:v.45;No.380
  • 基金:国家自然科学基金项目(31572407);; 山西省研究生教育创新项目(2017SY036)
  • 语种:中文;
  • 页:SXLX201710028
  • 页数:4
  • CN:10
  • ISSN:14-1113/S
  • 分类号:113-116
摘要
通过对9月龄黑山羊附睾头细胞进行不同浓度、不同时间新霉素和嘌呤霉素的处理,收集各个时间的细胞并进行计数,旨在研究山羊附睾头细胞对新霉素和嘌呤霉素的耐受浓度。结果显示,山羊附睾头细胞在转染时对新霉素和嘌呤霉素适宜的质量浓度分别为400,2μg/m L;试验细胞计数结果与细胞生长状态相一致,山羊附睾细胞与其他哺乳动物不同组织器官对新霉素和嘌呤霉素的耐受浓度基本一致。研究结果可为后期基因敲除和过表达载体转染进山羊附睾头细胞时抗性基因浓度的确定提供了参考,也为后期基因功能的研究奠定了基础。
        This research was designed to study the tolerance of goat epididymal cells to neomycin and puromycin. The cells of different time were collected and counted at different concentrations of neomycin and puromycin. The results showed that the appropriate concentrations of goat epididymal cells to neomycin and puromycin were 400, 2 μg/m L, respectively. The results of this test cell count consistent with the cell growth status, and the tolerance to neomycin and puromycin of goat epididymal cells and other mammalian cells of different tissues and organs was consistent. The results of this study will provide a reference for gene knockout and the determination of resistance genes of overexpression vector transfection into the goat epididymal cells, and to provide a basis for the study of the gene function.
引文
[1]梁茂文,毛杨毅,韩一超,等.吕梁黑山羊特色产业发展思考[J].山西农业科学,2017,45(8):1369-1371.
    [2]张春香,张国林,郭丽娜,等.基于高通量转录组测序的山羊睾丸和附睾头差异表达基因分析[J].畜牧兽医学报,2014(3):391-401.
    [3]徐义兵,刘娜,黄毓茂.潮霉素抗性基因筛选标记质粒的构建及LL37的表达[J].中国畜牧兽医,2012(4):86-90.
    [4]占今舜,邢月腾,张彬.细胞培养技术的应用研究进展[J].饲料博览,2013(1):8-11.
    [5]常灏.HSL敲除小鼠睾丸精子受精能力的单精注射研究[D].北京:首都师范大学,2009.
    [6]范晓梅,张通,栗瑞兰,等.绒山羊附睾上皮细胞培养方法的建立及其生长特性[J].畜牧兽医学报,2017(7):1212-1220.
    [7]张君慧,董赛珍,吴立君,等.大鼠附睾上皮细胞的培养及其功能测定[J].生殖医学杂志,1995(4):232-235.
    [8]何建华,徐冬旸,刘星宇,等.食源性单核细胞增生李斯特菌的重金属镉抗性及其与抗生素耐药性的关系研究[J].现代食品科技,2013(3):479-482.
    [9]陆小军,孙昌瑞,马莹,等.杜氏利什曼原虫遗传转化中潮霉素及嘌呤霉素适宜浓度的筛选[J].寄生虫与医学昆虫学报,2008(2):120-122.
    [10]齐志敏,冯嘉轩,慈鑫鑫,等.利用CRISPR/Cas9基因编辑技术敲除Nrf2基因及Nrf2基因过表达载体的构建[J].中国兽医学报,2017(1):102-106.
    [11]季晓飞,赵慧琳,张莹,等.基因敲除质粒载体的构建及其在幽门螺杆菌基因敲除中的应用[J].中国病原生物学杂志,2016(12):1066-1069.
    [12]孙达权.山羊乳腺特异性载体的构建及细胞转染[D].杨凌:西北农林科技大学,2008.
    [13]郑卫.氨基糖苷类抗生素研究的新进展[J].国外医药(抗生素分册),2005(3):101-110.
    [14]滕慧,张亚雄.新霉素研究进展[J].三峡大学学报(自然科学版),2008(2):95-98.
    [15]成红.新霉素人工抗原的制备及鉴定[D].郑州:郑州大学,2013.
    [16]李婷.地塞米松对嘌呤霉素模型人足细胞损伤的保护机制研究[D].南京:南京医科大学,2011.
    [17]柴玉萍.氟伐他汀对嘌呤霉素刺激下足细胞β1整合素表达的影响及其机制的研究[D].南京:南京医科大学,2011.
    [18]郑临海.乳腺癌BT549细胞表达beclin 1基因对上皮间质转化的影响[D].广州:南方医科大学,2014.
    [19]陈明.mi R-586在牙髄干细胞/内皮前体细胞共培养成牙本质向分化和成血管中作用机制的实验研究[D].广州:南方医科大学,2016.
    [20]张爱霞,姚琼凤,赵书策.小鼠胚胎干细胞转OCT4启动的新霉素抗性基因的研究[J].医药前沿,2015(4):12-13.

© 2004-2018 中国地质图书馆版权所有 京ICP备05064691号 京公网安备11010802017129号

地址:北京市海淀区学院路29号 邮编:100083

电话:办公室:(+86 10)66554848;文献借阅、咨询服务、科技查新:66554700